Laboratorium
Cytometrii Przepływowej
Laboratorium Cytometrii Przepływowej ukierunkowane jest na świadczenie nowoczesnych usług badawczych w szerokim zakresie technik wykorzystujących cytometrię przepływową, w tym wykonywanie i planowanie eksperymentów, analizę danych oraz praktyczne szkolenia/warsztaty z cytometrii przepływowej. Dodatkowo laboratorium prowadzi badania naukowe z dziedziny immunologii związane z immunologicznym podłożem astmy i ednometriozy. Oferujemy wieloparametryczną ocenę fenotypu komórek, oznaczanie poziomu cytokin i cheomokin, produkcji wolnych rodników, analizę żywotności komórek i poziomu jonów wapnia, ploidalności roślin, badanie proliferacji, cyklu komórkowego, apoptozy, i wiele innych. Specjalizujemy się również w sortowaniu różnych populacji komórek, w tym rzadkich populacji jak limfocyty T regulatorowe, limfocyty B regulatorowe i komórki macierzyste). Posiadamy bogate doświadczenie w dziedzinie cytometrii przepływowej.
Oferujemy analizę przygotowanych i dostarczonych przez Klienta/Zleceniodawcę próbek oraz samodzielne wykonanie zlecanych eksperymentów/badań, w tym:
- Sortowanie komórek
- Immunofenotypowanie
- Analiza żywotności komórek
- Badanie proliferacji oraz cyklu komórkowego
- Analiza poziomu jonów wapnia
- Oznaczanie mitochondriów, potencjału błony mitochondrialnej i produkcji ROS
- Badanie ekspresji czynników transkrypcyjnych oraz cząstek sygnałowych (w tym ich fosforylacji)
- Oznaczanie poziomu cytokin, cheomokin, czynników wzrostu (przy użyciu CBA Cytometric Bead Array i/lub przy użyciu znakowanych przeciwciał)
- Analiza poliploidalności roślin
- System do multipleksowej analizy biomolekuł
Oferujemy również:
- Pomoc w projektowaniu i planowaniu eksperymentów bazujących na cytometrii przepływowej
- Opracowanie nowych protokołów badawczych wykorzystujących cytometrię przepływową
- Praktyczne szkolenia/warsztaty na zlecenie
- Cytometr przepływowy BD LSR Fortessa – wyposażony w lasery 405, 488, 561, 640, 405 i 375 nm, umożliwiające jednoczesną analizę 20 parametrów
- Cytometr przepływowy BD FACS Canto II – wyposażony w lasery 488, 640 i 405 nm umożliwiające jednoczesną analizę 10 parametrów
- Cytometr BD FACSCalibur – wyposażony w laser 488 nm i 635 nm umożliwiający jednoczesną analizę 6 parametrów
- Sorter komórkowy BD FACS Aria Fusion – wyposażony w lasery 488, 640 i 405 nm/375 nm umożliwiające jednoczesną analizę 16 parametrów oraz sortowanie 4 populacji, sortowanie na płytki oraz sortowanie pojedynczych komórek. Sorter jest dodatkowo wyposażony w komorę laminarną zatrzymującą aerozole tworzone podczas sortowania, co umożliwia sortowanie próbek BSL2.
- System do multipleksowej analizy biomolekuł (Bio-Plex 200;Biorad)
dr n. med. inż. Agnieszka Węgrzyn – Kierownik Laboratorium
mgr inż. Anna Kędzierska – Inżynier badań
Projekty naukowe:
SONATA 10: Ocena stabilności fenotypowej limfocytów T regulatorowych w astmie
Kierownik projektu: Agnieszka Węgrzyn; Okres finansowania: 2017-2019
Źródło finansowania: Narodowe Centrum Nauki
- Wegrzyn AS, Jakiela B, Rückert B, Jutel M, Akdis M, Sanak M, Akdis CA. T-cell regulation during viral and nonviral asthma exacerbations. J Allergy Clin Immunol. 2015 Jul;136(1):194-197.e9. doi: 10.1016/j.jaci.2014.12.1866. Epub 2015 Jan 17.
- Przeździecka-Dołyk J, Węgrzyn A, Turno-Kręcicka A, Misiuk-Hojło M. Immunopathogenic Background of Pars Planitis. Arch Immunol Ther Exp (Warsz). 2016 Apr;64(2):127-37. doi: 10.1007/s00005-015-0361-y. Epub 2015 Oct 5.
- Orłowski P, Kowalczyk A, Tomaszewska E, Ranoszek-Soliwoda K, Węgrzyn A, Grzesiak J, Celichowski G, Grobelny J, Eriksson K, Krzyzowska M. Antiviral Activity of Tannic Acid Modified Silver Nanoparticles: Potential to Activate Immune Response in Herpes Genitalis. Viruses. 2018 Sep 26;10(10). pii: E524. doi: 10.3390/v10100524.
- Jakiela B, Kosałka J, Plutecka H, Węgrzyn AS, Bazan-Socha S, Sanak M, Musiał J. Urinary cytokines and mRNA expression as biomarkers of disease activity in lupus nephritis. Lupus. 2018 Jul;27(8):1259-1270. doi: 10.1177/0961203318770006. Epub 2018 Apr 13.
- Zygmunt BM, Węgrzyn A, Gajska W, Yevsa T, Chodaczek G, Guzmán CA. Mannose Metabolism Is Essential for Th1 Cell Differentiation and IFN-γ J Immunol. 2018 Jul 20. doi: 10.4049/jimmunol.1700042
- Kornicka, Śmieszek A, Węgrzyn AS, Röcken M, Marycz K. Immunomodulatory Properties of Adipose-Derived Stem Cells Treated with 5-Azacytydine and Resveratrol on Peripheral Blood Mononuclear Cells and Macrophages in Metabolic Syndrome Animals. J Clin Med. 2018 Oct 24;7(11). pii: E383. doi: 10.3390/jcm7110383.
Autor: PORT - Polski Ośrodek Rozwoju Technologii, Opublikowano: 02.02.2016
